
Los kits High PapillomaStrip y High+Low PapillomaStrip son dos test moleculares que ofrecen una detección avanzada y genotipado del Virus del Papiloma Humano (VPH), permitiendo identificar hasta 37 subtipos en una sola prueba. Ambos tests están diseñados para detectar secuencias específicas de las regiones E6/E7 del ADN viral, altamente conservadas y directamente implicadas en la carcinogénesis. La detección de estas regiones permite un diagnóstico más preciso y fiable, diferenciando los genotipos de alto y bajo riesgo con alta sensibilidad.
El VPH es la enfermedad de transmisión sexual (ETS) más común a nivel mundial, con más de 40 genotipos capaces de infectar el tracto ano-genital. De estos, un tercio está directamente relacionado con el cáncer cervical y las neoplasias anales. Más del 90% de los casos de cáncer cervical son causados por infecciones de VPH no tratadas, lo que lo convierte en el cuarto cáncer más común en mujeres a nivel global.
Según la OMS, el cribado del VPH es uno de los métodos más eficaces para la detección temprana de lesiones precancerosas, ya que permite identificar la presencia del virus antes de que cause daño en los tejidos. La capacidad de detectar y diferenciar los genotipos de alto y bajo riesgo a partir de las regiones E6/E7 hace que High PapillomaStrip y High+Low PapillomaStrip sean herramientas esenciales para la prevención y control del cáncer asociado al VPH.
Fiable
Detección de co-infecciones
37 subtipos en 1 solo test
Amplificación de regiones E6/E7
Uso de sondas y primers específicos para cada genotipo


Detección de 19 o 37 subtipos de VPH en una sola prueba, lo que permite obtener información más completa para el diagnóstico, así como hacer un seguimiento de la infección (pudiendo comprobar si los subtipos desaparecen o no tras el tratamiento) y tras la aplicación de la vacuna contra el VPH.
Detección individual de los subtipos. La detección no agrupada de los subtipos permite la identificación de posibles co-infecciones, ya que proporciona información mucho más detallada acerca de la presencia de los mismos.
Uso de primers y sondas específicos para cada subtipo. Esto permite aumentar la especificidad de la prueba y eliminar reacciones cruzadas. De esa forma, el resultado obtenido es más fiable.
Amplificación de las regiones E6/E7 en lugar de la L1. Las estrategias de PCR del VPH dirigidas a la región E6/E7 pueden ser preferibles a la L1 debido a las siguientes razones:
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N.º
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Título
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Link
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Idioma
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C1
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Comparison of five automated CE/IVD labeled HPV DNA genotyping test systems
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Inglés
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C2
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Prevalence and genetic distribution of human Papyloma virus in women with cervical intraepithelial neoplasia
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Inglés
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C3
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Incidence of Chlamydia trachomatis infection in high risk human papillomavirus infected young women
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Inglés
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C4
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Preliminary evaluation of the High+Low PapillomaStrip Assay Colli-PeeTM collected UCM preserved urine
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Inglés
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A1
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Human papillonavirus infection in oral fluids of HIV-1-positive men: prevalence and risk factors
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Inglés
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A2
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Current HPV tests
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Inglés
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A3
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Test Kitu Detekci a Genotypizaci HPV – High a Low Papilloma Strip 8 + 8 strips
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Polaco
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A4
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Identificación, Incidencia y Distribución de Genotipos del Virus del Papilloma Humano en una muestra de la población costarricense
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Español
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A5
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Human papilloma virus genotyping in women with abnormal cytology (Ocena genotypów wirusów brodawczaka ludzkiego u kobiet z nieprawidlowa cytologia)
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Polaco
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A6
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Erfaringer med HPV-testing
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Noruego
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A7
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In situ FoxP3+ and IL-10 over expression is associated with high grade anal lessions in HIV infected patients
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Inglés
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A8
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Human Papillomavirus Genotyping among Different Cervical Smears in Duhok/Irak
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Inglés
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A9
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Colli-Pee – Performance of a game-changing sampling device for HPV-based cervical cancer screening
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Inglés
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A10
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Human Papillomavirus Genotype Distribution among Cervical Cancer Patients prior to Brazilian National HPV Immunization Program
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Inglés
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A11
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Secretory leukocyte protease inhibitor expression and high-risk HPV infection in anal lesions of HIV positive patients
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Inglés
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A12
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Genetic diversity and bioinformatic analysis in the L1 gene of HPV genotypes 31, 33 and 58 circulating in women with normal cervical cytology
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Inglés
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A13
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Influence of sexually transmitted infections on the cervical cytological abnormalities among Iranian women: A cross-sectional study
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Inglés
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A14
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Prevalence of Human Papillomavirus (HPV) Genotypes among Women During 2015-2020 in Mashhad, Iran
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Inglés
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A15
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Comparison of four different human papillomavirus genotyping methods in cervical samples: Addressing method-specific advantages and limitations
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Inglés
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A16
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HPV and HIV Coinfection in Women from a Southeast Region of Romania—PICOPIV Study
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Inglés
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A17
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Distribution of HPV genotypes in Mashhad, Iran: insights from a 2022-2023 study
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Inglés
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A18
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HPV Genotype Trends in Iran: Necessity for a Reevaluation of Prevention Strategies
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Inglés
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A19
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Associations between genetic HPV 16 diversity and cervical cancer prognosis
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Inglés
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A20
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Detection of Viruses with Oncogenic and Oncomodulatory Potential in Head and Neck Tumors-External Auricle
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Inglés
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A21
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Dynamics of Cervical Lesions After Excisional Treatment in Relation to HPV Genotypes and Cytological Findings
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Inglés
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A22
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HUMAN PAPILLOMA VIRUS (HPV) AS A POTENTIAL CO-FACTOR IN BREAST CANCER - A RETROSPECTIVE CASE-CONTROL STUDY
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Inglés
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A23
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Human Papillomavirus Genotype Distribution in Women with Minor Cervical Cytological Abnormalities
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Inglés
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A24
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High prevalence of HPV-56 and HPV-39 in Sari, Iran: an analysis of genotype distribution
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Inglés
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A25
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Molecular-Epidemiological Study for 19 High and Medium- Risk HPV Types in Bulgarian Patients
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Inglés
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A26
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P-159 Association of acrochordons and colorectal polyps: A pilot study to identify potential genetic or viral etiology
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Inglés
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A27
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Enfermedad de Heck: Caso atípico en un adolescente sano originario de Ecuador
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Español
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T1
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Validation of a self-sampling device for the screening of the Human Papilloma Virus (HPV) in the Catalan Population
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Inglés
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T2
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Determinación de genotipos del Virus de Papiloma Humano y análisis con el marcador inmunohistoquímico Ki67 en biopsias con displasia cervical de pacientes del Hospital Dr. Max Peralta de Cartago durante el Año 2013
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Español
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En este seminario, la doctora Paula Cortiñas, reputada ginecóloga, habla sobre cómo prevenir el cáncer cervical, así como sobre su relación directa con las infecciones por VPH.
La grabación del seminario está disponible bajo demanda. Si no pudiste asistir, ¡te invitamos a que nos la solicites!
Al tomar el hisopo, se recomienda almacenarlo sin ningún medio de transporte. Si se añade PBS (porque se realizan otros exámenes que lo requieren), la muestra debe almacenarse congelada hasta la extracción. De lo contrario, podrían crecer otros microorganismos, aumentando la cantidad de ADN y degradando la muestra. Antes de la extracción, se resuspende el hisopo seco en 500 µl de PBS en un tubo de 1,5 ml, mezclando con vórtex durante 1 minuto. A continuación, se centrifuga el tubo durante 2 minutos, a 18.000 g. Tras desechar el sobrenadante, se añaden 500 µl de PBS, y se resuspende el pellet mediante vórtex. Centrifugar el tubo durante 2 minutos, a 18.000 g. Descartar el sobrenadante. Resuspender el pellet con 200 µl de PBS, y proceder como se indica en el protocolo (20 µl de proteinasa K + 20 µl de tampón AL, etc.). De este modo, se eliminará el material interferente y la PCR será más «limpia».
Para la toma de muestra, se recomienda utilizar una torunda de algodón o cepillo seco y estéril. Hay que asegurarse de tomar una cantidad suficiente de muestra, pero sin que se produzca el sangrado de la lesión. Posteriormente se guardará la torunda en su tubo, sin utilizar ningún medio conservante. Mantenerla a 2/8 ºC si se va a procesar en menos de una semana, o a -20ºC si se va a procesar más adelante.
No, no es necesaria la presencia de lesiones. El diagnóstico se puede realizar antes de la aparición de las lesiones.
Los kits de auto-toma no se han validado. Por lo tanto, en principio, es aconsejable que la toma sea realizada por un profesional sanitario.
Una posible explicación es que la paciente se infecte y recupere entre los análisis. Si la infección es leve y el sistema inmune está fuerte, la paciente puede superar la infección y que, para el siguiente análisis, se haya contagiado de nuevo con otros tipos. Existe también la posibilidad de que la paciente tenga co-infecciones con varios tipos de VPH, pero que todos ellos posean una carga vírica muy baja. En estos casos, es posible que no lleguen a amplificarse todos los tipos en cada ensayo, sino que se amplifiquen de forma aleatoria. Dado que no se repiten los tipos no parece probable, pero no se puede descartar. Otra razón podría ser que hubiese habido contaminaciones en los diferentes ensayos. Es poco probable que se haya dado en varios ensayos de forma diferente, pero siempre hay que comprobarlo poniendo blancos en todos los ensayos para asegurar la veracidad de los resultados.
Posiblemente se trate de una contaminación. Se deberán analizar blancos: si son correctos, entonces el resultado es válido. No debe extrañar porque la infección múltiple en estos casos es frecuente. En cambio, si el análisis de blancos sale contaminando, entonces existe contaminación. En ese caso se debe desechar los reactivos y realizar el protocolo de limpieza. No se deben analizar más muestras hasta que se obtengan varios blancos válidos. Para más información, ver tabla XXX.
Puede tratarse de un tipo no presente en el kit o que esté a poca concentración.